最近在忙新书，还有本职工作，所以修改会慢一点，大家可以等完本再看放疗(RT)是肺癌必不可少的治疗方式。对于不适合手术的IIIA和IIIB期肺癌患者，根治性放化疗是治疗标准，这一点已被广泛接受。不幸的是，放疗后肿瘤的再生长是成功控制疾病的主要障碍。
临床前研究表明，放疗对原发部位和转移部位的肿瘤免疫微环境具有双重作用。一方面，局部照射有可能激活针对远离照射区域的肿瘤细胞的全身免疫反应，即远隔效应，由Mole在1953年首次报道。RT促进肿瘤抗原从垂死的肿瘤细胞中释放，上调MHCI类表达，并增加多种细胞因子和免疫效应分子的表达，包括白细胞介素(IL)1、细胞间粘附分子1(ICAM1)和血管细胞粘附分子1(VCAM1)，所有这些都有助于由辐射引发的持久和全身抗肿瘤免疫。另一方面，放疗促进了肿瘤细胞的免疫逃避。例如，RT上调多种免疫抑制细胞因子的表达，如肿瘤坏死因子α(TNFα)、IL6、IL10和转化生长因子β(TGFβ)。RT促进免疫抑制细胞的积累，例如肿瘤相关巨噬细胞(TAM)、调节性T(Treg)细胞和髓源性抑制细胞(MDSC)。辐射增强免疫检查点的活性，如程序性细胞死亡蛋白1(PD1)/PDL1、细胞毒性T淋巴细胞相关蛋白4()、T细胞免疫球蛋白和含粘蛋白结构域的蛋白3(TIM3)，和淋巴细胞激活基因3(LAG3)。
为了克服放疗的免疫抑制作用，已经提出并测试了免疫疗法和放疗的各种组合。在PACIFIC研究中，标准放化疗后加入durvalumab可延长III期NSCLC患者的无进展生存期和总生存期。PACIFIC研究的巨大成功不仅改变了III期非小细胞肺癌的临床指南，也引起了其他免疫疗法与RT结合的极大兴趣。
MDSCs的积累和激活在免疫抑制的建立中起关键作用。RT对MDSCs的确切影响是复杂的。大分割照射(20Gy)抑制MDSCs的积累和浸润，而较低剂量的照射往往会促进MDSCs募集到肿瘤中。此外，临床前和临床研究表明，胃肠道肿瘤，包括结直肠癌和肝癌，在放疗后相对容易出现MDSCs水平降低，而在其他肿瘤模型和临床环境中，如胶质瘤、肺癌、乳腺癌、头颈部鳞癌、前列腺癌和宫颈癌，导致MDSC数量持续增加。蔡等人首次报道MDSCs的PDL1表达被辐照上调。然而，关于MDSCs的确切作用，尤其是其潜在机制，在辐照后塑造TME方面知之甚少。
MDSCs是一组具有强大免疫抑制能力的异质髓细胞。根据表型和形态，MDSCs又可分为多形核MDSCs(PMNMDSCs，又称粒细胞型MDSCs)和单核型MDSCs(MMDSCs)。
免疫抑制活性是MDSCs的关键标志。MDSCs的抑制机制包括诱导型一氧化氮合酶(iNOS)、精氨酸酶1(ARG1)和吲哚胺2，3双加氧酶(IDO)的表达，以及一氧化氮(NO)和活性氧(ROS)的产生。这些不同的机制不会同时起作用。人们普遍认为PMNMDSCs和MMDSCs通过不同的机制调控TME。此外，PDL1的上调也被认为是辐射招募MDSCs的免疫抑制机制之一。目前，对于辐照诱导的MDSCs对TME的影响及放疗的治疗效果尚无一致的结论。
磷酸二酯酶5(PDE5)抑制剂，如西地那非和他达拉非，可以阻断环磷酸鸟苷(cGMP)的水解。最新数据表明，PDE5抑制剂能够通过抑制荷瘤(TB)小鼠和患者MDSC中iNOS和ARG1的活性和表达来促进抗肿瘤免疫。然而，PDE5抑制剂如何影响MDSC的亚群以及RT和PDE5抑制剂的组合是否会延迟辐射后的肿瘤再生尚未得到测试。
我们最近的研究表明，消除招募的MDSC会延迟放疗后路易斯肺癌(LLC)的再生。在这里，我们报告了局部照射通过促进PMNMDSC的增殖及其随后向TME的募集而削弱了抗肿瘤免疫力。ARG1的上调和激活是照射后PMNMDSCs介导的T细胞抑制的主要机制。西地那非与放疗的组合通过抑制ARG1过表达和PMNMDSC募集消除了辐射衍生的免疫抑制。
在TB小鼠和癌症患者中，MDSCs随着肿瘤的生长而扩增。MDSCs的两个亚群之间的比例取决于特定的肿瘤模型和微环境。为了监测同源LLC模型中MDSC的丰度，我们通过免疫表型分析确定了接种后肿瘤的生长以及LLC小鼠中不同时间点的总体MDSC及其亚群。
如图1C所示，肿瘤组织中总MDSCs的百分比随着肿瘤的发展而稳步增加，从接种后第一周肿瘤浸润淋巴细胞的不到10（5.84±1.22）上升到第四周超过20（21.71±3.22）（P<0.01）。在我们的LLC模型中，PMNMDSCs占总MDSCs的94.94±8.47，并且与总MDSCs具有相同的肿瘤发展趋势（P<0.05）。对亚群进行分析，虽然MMDSCs增加了大约5倍，但差异没有统计学意义。
为了更好地了解MDSCs的全身分布，我们还研究了MDSCs在外周血、脾脏和骨髓中的比例。仅在接种LLC细胞一周后，TB小鼠外周血中的MDSC百分比是无瘤小鼠的两倍(27.33±4.62vs.12.48±0.93，P<0.05)，3周后的MDSC百分比是无瘤小鼠的5倍(27.33±4.62vs.12.48±0.93，P<0.05)。TB小鼠外周血中PMNMDSCs的比例也增加，而MMDSCs的比例与肿瘤大小无关。
PDL1是肿瘤细胞、MDSCs、巨噬细胞和树突状细胞表达的最重要的检查点分子之一。为了确定TB小鼠MDSCs的PDL1表达是否与健康小鼠不同，我们通过流式细胞术测试了MDSCs的PDL1表达。结果表明，TME中MDSCs上PDL1的平均荧光强度（MFI）从在LLC细胞接种后的第一周386.8±100.9逐渐增加到第四周的1，068.0±121.8（P<0.01），这表明PDL1在我们模型中的MDSC中具有潜在作用。
在脾脏和骨髓中，随着肿瘤的发展，MDSCs的比例也显著增加，其模式与肿瘤组织和外周血中的MDSCs相同。此外，我们在TB小鼠中观察到明显的脾肿大，这与我们观察到的MDSCs在脾内聚集一致。
为了确定局部照射对肿瘤生长和MDSCs的影响，当肿瘤直径达到7.5mm时，我们使用大分割RT(20Gy/F)治疗皮下LLC肿瘤。放疗导致肿瘤进展延迟长达一周，在第7至第10天的最小体积约为500mm3，但此后肿瘤开始再生。根据放疗前后肿瘤生长曲线，我们选择放疗后第3天为再生前生长，放疗后1周为肿瘤体积最小时为再生开始，放疗后2周和3周为再生阶段。肿瘤组织苏木精伊红染色显示，与未治疗的肿瘤相比，放疗后的肿瘤中有更多的浸润性炎症细胞。随后的CD11b特异性免疫组化染色显示，大多数炎症细胞是CD11b髓系细胞，这表明局部照射可能导致MDSCs的积累。为了证实我们的假设，我们在局部照射后的不同时间点对总MDSCs和这两个亚群进行了流式细胞术分析。局部照射后，放疗后肿瘤浸润MDSCs的比例比未治疗肿瘤高2倍(ctrlvs.RT21.33±3.29vs.44.10±3.00，P<0.001)。PMNMDSCs与总MDSCs具有相同的增加趋势(ctrlvs.RT16.37±2.47vs.38.66±4.24，P<0.001)，而MMDSC比例保持在约0.1，且与肿瘤大小和治疗无关。外周血情况同肿瘤组织。
为了确定受照射肿瘤中PMNMDSC的逐渐积累是否有助于LLC肿瘤的再生长，或者这种积累是否仅仅是肿瘤生长的结果，使用抗Ly6G单克隆抗体来消耗MDSC.抗Ly6G抗体的应用显着降低了肿瘤部位和外周血中PMNMDSC的频率（P<0.05）。此外，用抗Ly6G抗体治疗大大延迟了照射后的再生，这表明PMNMDSC的募集对肿瘤再生至关重要。
虽然PMNMDSCs利用一系列机制来抑制抗肿瘤免疫反应，这涉及到许多免疫细胞和细胞因子，但对CD8T细胞的抑制无疑是最重要的。为了确定RT后PMNMDSCs诱导的免疫抑制是否依赖于CD8T细胞，我们通过流式细胞术评估了CD8T细胞的数量和功能。
如图3D所示，CD8T细胞的百分比随着照射从11.71±2.31下降到2.42±0.62(P<0.01)。PMNMDSC耗竭逆转了这种下降（RTantiLy6G抗体2.42±0.62vs.20.12±3.92，P<0.01）。为了更好地了解CD8T细胞浸润肿瘤部位的功能状态，我们测量了CD8T细胞内部和表面上IFNγ、CD28和PD1的表达。局部RT显着降低了CD8T细胞分泌IFNγ的比例，从33.064.53降至13.252.08，并增加了表达PD1的CD8T细胞的比例（ctrlvs.RT253.20±57.03auvs.538.80±98.76）au，P<0.05）。
CD28表达未观察到显着变化。当抗Ly6G抗体被给予辐照小鼠时，IFNγ分泌达到与未处理的LLC小鼠相同的水平（29.74±3.55），而与辐照小鼠进行比较抗Ly6G抗体处理后的PD1表达没有变化小鼠。因此，在这部分我们建议PMNMDSCs通过抑制CD8T细胞促进放疗后肿瘤的再生。PMNMDSCs不仅抑制了TME中CD8T细胞的数量，而且还抑制了其活性。
为了确定辐照诱导MDSCs的抑制机制，我们进行了免疫组化染色及iNOS和ARG1活性检测。肿瘤切片的免疫组化染色显示，局部RT增强了ARG1的表达，但没有增强iNOS的表达。ARG1活性测定表明，局部照射显著提高了ARG1的活性，从0.400.15U/L提高到3.780.39U/L((P<0.01)。相比之下，NO荧光标记的iNOS活性检测显示，辐照和未处理的肿瘤组织样本的荧光强度相似。
PDL1的表达是MDSCs的一种新型免疫抑制机制。然后我们询问PDL1上调是否是RT后MDSCs介导的免疫抑制的机制之一。通过流式细胞术分析辐照后MDSC中PDL1的表达。图4E显示，与未处理组相比，受照射肿瘤的MDSC中的PDL1表达在照射后不久显着增加（照射后第三天：ctrlvs.RT443.9±175.3auvs.1328.0±324.3au，P<0.05）.然而，此后PDL1表达继续下降，局部照射组在照射后第3周显着低于未治疗组（ctrlvs.RT1，465.0±399.6auvs.407.5±164.8au，P<0.05）。外周血中MDSCs的PDL1表达与局部肿瘤部位的表达趋势相同。
以上数据表明ARG1表达的上调是照射后PMNMDSCs抑制功能的合理机制。然而，不涉及PDL1和iNOS的调节。为了进一步证实这一假设，在辐射后通过灌胃给予ARG1抑制剂norNOHA。10mg/kg/dnorNOHA有效地将ARG1活性从3.780.39U/L降低到2.020.25U/L（P<0.01）。
RT后给予norNOHA显着增加CD8T细胞比例（RTvs.RTnorNOHA2.420.62vs.6.140.64，P<0.01），并伴有肿瘤再生延迟。iNOS抑制剂1400W对肿瘤再生长没有影响。
我们的结果表明，RT通过上调肿瘤内PMNMDSC的百分比和ARG1活性来促进肿瘤免疫逃避。推测抑制PMNMDSCs及其ARG1活性可能是一种新的抗肿瘤策略是合理的。越来越多的证据表明，PDE5抑制剂可以抑制TB小鼠和癌症患者MDSC中iNOS和ARG1的活性和表达。因此，通过灌胃给予西地那非20mg/kg/d，以研究它是否可以促进RT的抗肿瘤作用并阐明潜在机制。如图5B所示，正如我们预期的那样，西地那非延迟了照射后的肿瘤再生长，这与阳性对照NorNOHA相当。TME的免疫特征表明，当给予西地那非时，肿瘤内PMNMDSC的比例从38.66±4.24下降到23.57±2.38。
此外，西地那非也显着降低了ARG1的表达。为了进一步检查西地那非对MDSC的抑制是否真的导致抗肿瘤免疫增强，我们分析了肿瘤内CD8T细胞的比例和活性。流式细胞术分析表明CD8T细胞的百分比从2.42±0.62增加到7.21±1.22。
此外，当给予西地那非时，CD8T细胞分泌的IFNγ也显着升高。因此，我们证实PDE5抑制剂西地那非通过调节PMNMDSCs改善了照射后肿瘤免疫微环境。西地那非联合放疗可能是提高放疗疗效的一种有前景的策略。
工作揭示了PMNMDSCs中ARG1通路介导RT后肿瘤再生的新机制，如图6所示。我们认为，PMNMDSCs是辐照招募的主要亚型，而不是MMDSCs。在广泛的免疫抑制机制中，ARG1的上调和激活是PMNMDSCs在放疗后抑制CD8T细胞的主要机制。为了克服PMNMDSCs引起的免疫抑制，我们提出并证明，sildenafil和RT联合使用降低了PMNMDSCs在TME内的募集和免疫抑制作用，激活了CD8T细胞应答，导致肿瘤生长延迟。综上所述，我们的研究结果为缓解免疫抑制TME以提高RT治疗效果提供了一种新的解决方案。虽然所有这些结果都是在LLC小鼠模型中进行的，但同样的机制是否适用于其他肿瘤模型尚不清楚。此外，在不同的辐射方案下，MDSCs及其亚型如何影响TME仍未确定。因此，这些问题还需要进一步的研究来解决。